達(dá)學(xué)堂·答疑討論
Q:凍組織的時候加幾滴水,加以固定,這個方法行嗎?
答:這個沒有試過,原則上講是不行的。
Q:甲狀腺冰凍有時候切片染完上面膠質(zhì)有時候有,有時候沒有,怎么回事呢?
答:95%酒精固定有時膠質(zhì)會脫落。出現(xiàn)這種情況除部分與制片有關(guān)外,與組織本身的結(jié)構(gòu)特點、膠質(zhì)的吸收、濃聚狀態(tài)也有關(guān)。切片也不要太薄。返藍(lán)氨水濃度不要太高,0.2%足夠了。洗片時動作輕柔。
Q:如果科研標(biāo)本取材下來冷凍保存,后期拿出來再切冰凍,怎么處理才能減少冰晶的產(chǎn)生?
答:組織冷凍是動態(tài)的,溫度低于-65度蛋白酶才失活,科研要冷凍組織就要速凍到-70度或液氮。切片時把組織取出來放在冰凍機(jī)里復(fù)溫20分鐘左右就差不多可以切了。
Q:返藍(lán)液ph大于8.2會有什么影響呢?
答:返藍(lán)液一般pH為7.5-9.0,8.2最佳(國外推薦)。我實驗是pH 大于12會掉片。pH太高,如果沖洗不干凈,會影響后續(xù)伊紅染色。
Q:水溶性伊紅染液和醇溶性染液什么更不容易褪色?用于標(biāo)記取材時胃黏膜等小組織一般用什么做標(biāo)記?
答:兩者染色原理有異,水溶性有離子鍵作用,所以加冰醋酸增強(qiáng)染色作用明顯,醇溶性以取代反應(yīng)和靜電為主。處理好的組織,用這兩種伊紅效果都可以。我們不標(biāo)記,要標(biāo)記就得把伊紅放到酒精里,直接打到組織表面或加到固定液都容易褪色。
Q:能講下冰凍免疫組化的固定嗎,哪種固定液最好?
答:國外推薦,靳老師自己過去做免疫熒光都用4度丙酮10分鐘,略揮干后PBS洗,后續(xù)做。要做免疫組化,丙酮并不好,組織收縮比較嚴(yán)重,可用甲醇、AF液,也可以用廠家專門的IHC固定液。
Q:為什么甲狀腺冰凍用速凍了反而切出來一絲一絲的,可能是凍過了,但肉眼觀感覺又沒凍好,該怎么控制速凍時間了?
答:我們講課或做實驗時都是理想狀態(tài),在實際工作中,不可能給每一類組織設(shè)個專門的溫度,甲狀腺膠質(zhì)含大量線狀糖蛋白,容易玻璃化,大的膠質(zhì)結(jié)節(jié)又沒有間質(zhì)支撐,凍得溫度低于脆點就容易發(fā)脆。工作中如有多臺冰凍機(jī),可設(shè)置一臺溫度在-18度的專門切易脆的組織。冷凍組織時,隨時觀察,凍好就切,不要修的太深,脆的話稍復(fù)溫,一般都能解決。